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Cy3-UTP(10mM) 抑胃肽酶液 PERFEMIKER AuroraGel 标准型基质胶,不含LDEV
光引发剂LAP 人工胃液 1%柠檬酸钠缓冲液 Salkowskis比色液 人工脑脊液(aCSF,无菌)
4-Di-1-ASP 线粒体荧光探针(红色) 是苯乙烯基染料,用于染色活细胞线粒体。常被用于染色神经胶质瘤细胞、活体大脑组织等。
一、核心优势:线粒体靶向精准性与膜电位敏感性
双重作用机制实现高特异性定位
4-Di-1-ASP 分子含亲脂性苯乙烯基长链与阳离子吡啶基团:长链通过疏水作用嵌入线粒体膜脂质双分子层,阳离子基团则借助线粒体膜电位(ΔΨm,-150~-180 mV)的静电引力富集于线粒体基质,定位特异性达 98% 以上,几乎不与内质网、溶酶体等其他细胞器交叉染色(脱靶率<2%)。
与传统线粒体探针(如罗丹明 123)相比,其对线粒体的亲和力更强,即使在细胞快速迁移或线粒体剧烈融合 / 分裂时,仍能稳定锚定,避免信号漂移,适合捕捉线粒体动态变化(如神经元轴突中线粒体的双向运输)。
膜电位敏感性高,功能状态可视化
荧光强度与线粒体膜电位直接正相关:健康细胞膜电位高,探针富集多,红色荧光强(激发 / 发射≈551/576 nm);膜电位下降(如早期凋亡、氧化应激)时,探针外溢,荧光减弱;膜电位完全丧失(坏死细胞)时,荧光消失,可通过荧光变化直观区分细胞线粒体功能状态,无需复杂比值计算(如 JC-1 的红绿信号比),检测更便捷。
二、红色荧光的光谱优势与实验兼容性
低背景干扰,深层成像能力强
红色荧光(576 nm 发射)远离细胞自发荧光的主要波段(蓝色 / 绿色,发射峰<550 nm),在复杂样本(如神经组织切片、肿瘤类器官)中背景噪音比绿色探针(如罗丹明 123)降低约 50%,信噪比可达 35:1 以上,线粒体细微结构(如神经元树突中的线粒体、心肌细胞的肌浆网线粒体)清晰可辨。
红色光在生物组织中的散射少,穿透深度可达 40-60 μm(绿色探针约 20-30 μm),可观察 3D 细胞球内部或薄组织切片深层细胞的线粒体分布,无需过度切片即可获取完整线粒体形态信息。
多色实验灵活联用,无串扰
与绿色、蓝色探针光谱分离度高,串扰率<1.5%,可构建 “线粒体 + 其他靶点” 的多维度检测体系:
4-Di-1-ASP(线粒体,红色)+ FITC - 鬼笔环肽(细胞骨架,绿色)+ DAPI(细胞核,蓝色):同步观察线粒体分布、细胞骨架形态与核定位,分析线粒体与骨架的关联(如迁移细胞中线粒体沿骨架定向分布);
流式实验中,可与 PE-CD3(免疫表型)、7-AAD(细胞活性)联用,量化不同免疫细胞亚群的线粒体膜电位差异(如活化 T 细胞膜电位高于静息 T 细胞),细胞群分群更精准。
三、活细胞兼容性与操作优势
低毒性,适配敏感样本与长期观察
工作浓度(1-5 μM)下,对线粒体呼吸链活性(ATP 生成量)、细胞增殖及功能无显著影响(神经元细胞存活率>95%,神经递质释放量与未标记组一致),尤其适合神经细胞、胚胎干细胞等敏感样本 —— 例如标记原代神经元后,可连续 48 小时观察轴突中线粒体的运输动态,无神经元凋亡或轴突断裂。
不诱导氧化应激:探针自身 ROS 生成量<3%,避免因标记导致的线粒体损伤,适合研究细胞生理状态下的线粒体功能(如缺氧、营养缺乏对线粒体膜电位的影响)。
操作简便,适配多检测平台
染色步骤简单:直接加入培养基或缓冲液(如 HBSS),37℃孵育 10-20 分钟即可,无需透膜、固定或洗涤(少量胞质游离探针不影响信号),比免疫荧光标记节省 2-3 小时,适合高通量实验(如 96 孔板药物筛选);
兼容多种检测手段:
荧光显微镜 / 共聚焦:观察线粒体形态与动态(如融合、分裂、沿微管运输);
流式细胞术:定量细胞群线粒体膜电位异质性(如肿瘤细胞中低荧光亚群比例反映凋亡程度);
活体成像:标记斑马鱼胚胎线粒体,观察早期胚胎发育中线粒体的分布与功能变化。
四、典型应用场景
神经细胞线粒体研究
神经元线粒体运输:4-Di-1-ASP 标记原代海马神经元,通过延时摄影观察轴突中线粒体的双向运输(向轴突末梢或胞体移动),量化运输速度(正常情况下约 0.5-1 μm/s),分析阿尔茨海默病模型中运输速率下降与 tau 蛋白异常的关联。
细胞凋亡与药物筛选
凋亡早期检测:用化疗药(如顺铂)处理肿瘤细胞,1 小时后即可观察到 4-Di-1-ASP 荧光减弱(膜电位下降),比 Annexin V(2-3 小时阳性)更早捕捉凋亡信号,流式细胞术可定量低荧光细胞比例,评估药物诱导凋亡效率;
线粒体保护药物筛选:96 孔板培养心肌细胞,加入候选药物与氧化应激诱导剂(如 H?O?),通过荧光强度筛选能维持红色荧光的药物(如辅酶 Q10 衍生物),直观反映药物对线粒体膜电位的保护作用。
发育生物学研究
斑马鱼胚胎发育:4-Di-1-ASP 标记斑马鱼早期胚胎,荧光显微镜观察不同发育阶段(如囊胚期、原肠期)线粒体的分布变化 —— 囊胚期线粒体均匀分布,原肠期逐渐向细胞分化区域富集,反映线粒体功能与细胞分化的关联。
五、技术优化与注意事项
染色浓度控制
敏感样本(如神经元、胚胎细胞):1-2 μM 孵育 10 分钟,避免高浓度(>5 μM)导致的非特异性荧光;
常规细胞(如 HeLa、HUVEC):2-5 μM 孵育 15-20 分钟,确保线粒体信号清晰。
避免膜电位干扰因素
实验需避免使用影响膜电位的试剂(如缬氨霉素、FCCP),若需验证膜电位特异性,可设置 FCCP 处理组(膜电位完全丧失,荧光消失)作为阳性对照。
成像参数设置
荧光显微镜:546 nm 激光激发,570-590 nm 发射滤光片;共聚焦显微镜选择 561 nm 激光,585/40 nm 带通滤光片,激光强度控制在 15-25%(避免强光损伤线粒体)。
总结
4-Di-1-ASP 凭借 “线粒体高靶向性 + 红色荧光低干扰 + 低毒性” 的核心优势,成为活细胞线粒体研究的高效工具,尤其适合神经细胞等敏感样本、长时间动态成像及多色实验联用。相比绿色探针,其背景更低、穿透性更强;相比同类红色探针,其对神经细胞的兼容性更优,是神经生物学、细胞凋亡、发育生物学等领域的理想选择。
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