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Cy3-UTP(10mM) 抑胃肽酶液 PERFEMIKER AuroraGel 标准型基质胶,不含LDEV
光引发剂LAP 人工胃液 1%柠檬酸钠缓冲液 Salkowskis比色液 人工脑脊液(aCSF,无菌)
一、Rhod-FF AM 的分子设计与作用机制
Rhod-FF AM(罗丹明荧光素双乙酸酯)是一种细胞渗透性钙荧光探针,属于罗丹明类染料的衍生物。其核心优势源于独特的化学结构设计:
二、荧光特性的核心优势
光谱适配性:红色荧光(576 nm)远离细胞自发荧光(多为蓝色 / 绿色),在富含脂褐素或色素的细胞(如巨噬细胞、视网膜细胞)中背景噪音更低,信噪比提升约 30%。
多色实验兼容性:可与绿色荧光探针(如 GFP、FITC)或远红外染料(如 Cy5)同时使用,例如 “Rhod-FF AM+GFP - 钙调蛋白” 同步监测钙信号与蛋白定位,光谱串扰率<5%。
2.光稳定性与抗淬灭能力
相比钙绿(Calcium Green)等绿色探针,罗丹明类染料的光稳定性更强,在共聚焦显微镜下连续扫描 20 分钟,荧光衰减<20%,适合长时间钙动态追踪(如神经元钙火花的持续监测)。
三、细胞兼容性与动态检测优势
Rhod-FF AM 的工作浓度通常为 5-20 μM,对细胞代谢无显著影响(如心肌细胞染色后收缩功能保持 90% 以上),可用于原代细胞、干细胞等敏感样本的钙信号实时监测。
水解后的 Rhod-FF 与 Ca2?结合后无细胞毒性,适合连续数小时的钙振荡记录(如 T 细胞活化过程中的钙信号周期性变化)。
2.快速响应与空间分辨率
钙结合后荧光强度增强约 5-10 倍,响应时间<100 毫秒,可捕捉快速钙瞬变(如神经突触传递时的钙内流)。
红色荧光在细胞内扩散较慢,可精确定位钙信号来源(如内质网钙释放位点),避免绿色探针因扩散快导致的空间定位模糊。
四、典型科研应用场景
神经元钙活动成像:在脑片或原代神经元中,Rhod-FF AM 标记后通过双光子显微镜观察钙波传播(如海马 CA1 区锥体神经元的同步钙振荡),红色荧光穿透深度可达 100 μm,适合深层脑组织检测。
突触传递机制:结合 FM 染料标记突触囊泡,同步监测钙内流与递质释放,分析突触可塑性(如长时程增强 LTP 中的钙信号特征)。
2.心肌与肌肉细胞功能研究
心肌细胞钙瞬变检测:在离体心肌细胞或心脏切片中,Rhod-FF AM 标记后通过高速荧光显微镜记录收缩期钙浓度变化(如动作电位 - 钙瞬变耦联),评估心肌收缩功能。
平滑肌钙信号分析:在血管平滑肌中,检测受体激活(如 5-HT 受体)引发的钙释放,研究血管舒缩机制。
3.免疫学与细胞活化研究
T 细胞钙信号动态:在抗原刺激下,Rhod-FF AM 标记的 T 细胞可通过流式细胞术检测钙信号强度,分析 TCR 激活效率(如 CD4? T 细胞钙峰值与细胞因子分泌的相关性)。
肥大细胞脱颗粒调控:监测 IgE 刺激后胞内钙升高与组胺释放的时序关系,筛选抗过敏药物。
4.发育生物学与钙依赖过程
早期胚胎钙波监测:在斑马鱼胚胎中,Rhod-FF AM 标记后观察原肠胚形成期的钙信号波动,研究细胞迁移与钙信号的关联。
植物细胞钙信号:在保卫细胞中,检测 ABA 诱导的钙振荡,分析气孔关闭的分子机制(红色荧光在植物自发荧光背景中更易识别)。
五、技术优化与注意事项
染色条件优化:
贴壁细胞:5 μM Rhod-FF AM + 20% Pluronic F-127(助溶剂),37℃孵育 20 分钟;
悬浮细胞:10 μM 染料,孵育 30 分钟后洗涤,避免非特异性结合。
钙信号校准:使用钙校准缓冲液(如 10 mM EGTA/10 mM CaCl?)建立荧光强度与 [Ca2?] 的标准曲线,提高定量准确性。
仪器适配:流式细胞术需配备 561 nm 激光(如黄激光)与 585/42 nm 滤光片;荧光显微镜建议使用 TRITC 通道(545 nm 激发)。
总结
Rhod-FF AM 通过 “红色荧光 + 高钙亲和力” 的设计,在钙信号检测中实现了 “低背景、深穿透、活细胞兼容” 的多重优势,尤其适合需要规避自发荧光干扰或进行深层组织成像的场景。与绿色钙探针相比,其光谱特性和光稳定性使其在神经科学、心肌功能研究及多色实验中具有独特价值,为钙信号动态分析提供了高效、精准的工具。
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