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ApopView? 488 Caspase-3 Substrate 基于 caspase-3/7 活力检测细胞凋亡提,适用于荧光显微术和流式细胞术。相比其他基于 (FLICA) 分析的 Caspase 的荧光底物或荧光抑制剂,ApopView? 488 Caspase-3 Substrate 检测 caspase-3/7 活性的同时不会抑制完整细胞的凋亡过程。
Substrate 由耦合 Ccaspase-3/7 DEVD 识别序列的荧光 DNA 染料组成。Substrate 最初无荧光,穿过细胞膜进入细胞质,在凋亡细胞中,Caspase-3/7 剪切 Substrate,释放高亲和性的 DNA 染色,这种染料迁移到细胞核标记 DNA 并发出明亮的绿色荧光。因此,ApopView? 488 Caspase-3 Substrate 是双功能的,既可以检测 Caspase-3/7 活性,又可视化细胞核在细胞凋亡进行中的形态学变化。ApopView? 488 染色可以甲醛固定并兼容后续免疫染色实验。
ApopView? 488 Caspase-3 Substrate 提供 DMSO 和 PBS 两种溶解形式。PBS 形式可用于对DMSO 毒性敏感的细胞,在对 DMSO 不敏感的细胞类型中,添加 DMSO 溶解形式可增强ApopView? 488 的孵育染色效果。
1. 高特异性识别凋亡细胞
Caspase-3 特异性激活:荧光染料为 “底物 - 荧光探针” 偶联物(如 DEVD-AMC 与荧光基团 488 结合),仅在细胞凋亡时被激活的 Caspase-3 酶切割,释放出绿色荧光(激发 / 发射波长约 490/520 nm),避免非凋亡细胞的背景干扰。
区别于坏死细胞:坏死细胞因膜通透性增加会非特异性摄取染料,而该探针需酶切激活,仅在凋亡早期(膜完整时)即可特异性标记,适用于区分凋亡与坏死细胞。
2. 活细胞实时动态监测
细胞膜透性设计:染料以 AM(乙酰甲氧基)酯化形式存在,可自由穿过活细胞膜,进入细胞后被内源性酯酶水解为活性形式,避免对细胞的毒性和操作损伤。
实时追踪凋亡进程:无需固定或破膜,可直接对活细胞进行动态荧光成像(如共聚焦显微镜)或流式检测,捕捉 Caspase-3 激活的早期事件(如药物处理后数小时内的凋亡启动)。
3. 荧光信号稳定且灵敏
高强度绿色荧光:488 荧光基团光稳定性强,与传统 FITC 相比,抗光漂白能力更优,适合长时间活细胞成像,信号衰减慢。
低检测阈值:单个细胞内 Caspase-3 激活即可触发荧光探针切割,荧光强度与酶活性呈正相关,可检测微量凋亡细胞(如早期凋亡率 < 5% 的样本)。
4. 多色实验兼容性佳
光谱匹配常用设备:488 nm 激发光与流式细胞仪、荧光显微镜的 FITC 通道完全兼容,无需额外调整设备参数。
多参数联合分析:可与 PI、Annexin V-APC 等染料联用,同步检测细胞凋亡(Caspase-3 激活)、坏死(PI 阳性)或细胞膜损伤(Annexin V 结合),实现凋亡进程的多维分析。
5. 操作简便且实验周期短
一步法染色:仅需将染料加入培养基中孵育(通常 30 分钟 - 1 小时),无需洗涤或复杂预处理,相比 Western blot 等方法节省 3-4 小时实验时间。
适用范围广:可用于贴壁细胞(如 HeLa、293T)、悬浮细胞(如 Jurkat)及原代细胞(如免疫细胞),兼容多种培养体系(如 96 孔板高通量筛选、3D 细胞模型)。
6. 细胞毒性极低
非代谢抑制性设计:AM 酯化形式无活性,进入细胞后才释放荧光探针,对细胞增殖、周期等生理状态无显著影响,适合长期毒性实验或药物筛选。
该试剂盒的荧光染料通过 “酶切激活 + 活细胞透性 + 稳定荧光” 的设计,在凋亡检测中实现了 “特异性高、动态监测、多色兼容” 的优势,尤其适用于需要实时观察凋亡早期事件、多参数分析或高通量筛选的实验场景。
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